INTRODUCCIÓN

En el Perú, los productores cafetaleros utilizan principalmente el sistema de beneficio húmedo para el procesamiento del café cerezo, que involucra subprocesos de despulpado, fermentado, lavado y secado (Diaz & Carmen, 2017). La cereza del café, contiene un mucílago (miel) que representa entre el 5 % al 14 % del peso del cerezo (Arteaga-Cuba et al., 2021), este mucílago durante el subproceso de lavado, origina un residuo líquido conocido como “agua miel” que se caracterizan por su alta acidez y materia orgánica (Gallego Ocampo & Mejía Francia, 2016).

El proceso de beneficio húmedo del café es una actividad de alto consumo de agua, donde se utiliza agua limpia y salen aguas mieles (aguas residuales) (Zambrano-Franco & Izaza-Hinestroza, 1998), el consumo de agua, dependiendo de la tecnología usada, puede llegar hasta los 40 litros de agua por kilogramo de café pergamino seco (c.p.s), la cual tiene una carga en términos de Demanda Química de Oxígeno (DQO) de alrededor de 33,000 ppm, que podría llegar hasta los 110,000 ppm y sólidos totales alrededor de 28,000 ppm (Gallego Ocampo & Mejía Francia, 2016; Zambrano-Franco & Izaza-Hinestroza, 1998), además, estas aguas junto con los residuos de la pulpa contaminan el suelo, agua y aire (Arteaga-Cuba et al., 2021), así como suelen convertirse en focos infecciosos para la salud de las personas.

Los altos niveles de contaminación de las aguas mieles se convierten a la actualidad en un desafío para la producción ambientalmente responsable, requiriendo de tecnologías eficientes para reducir su carga residual antes de ser depositadas en el suelo o agua (Sengupta et al., 2020), esto vinculado a la certificación orgánica con las que cuentan muchas organizaciones cafetaleras en el Perú y el mundo. En el Perú para el cumplimiento de las normas ambientales vigentes, la Autoridad Nacional del Agua (Decreto Supremo N° 004-2017-MINAM, 2017) ha establecido los Límites Máximos Permisibles de DQO en el agua de 1500 mg/L y pH entre 5 a 6, para que esta pueda ser utilizada al menos para el riego.

Estas aguas mieles, en su mayoría no son adecuadamente manejadas, ya que se vierten directamente en el suelo o vertientes de aguas afectando directamente los nichos ecológicos existentes en estos. Ante ello, se ha venido investigando diversas tecnologías que podrían ayudar a la limpieza de estas aguas e incluso volverlas reaprovechables (Alemayehu et al., 2021), estas aguas residuales tratadas con tecnologías eficientes pueden tener características interesantes para el uso agrícola (Reyes-Prado et al., 2022). Entre estas tecnologías que buscan contribuir a la limpieza de las aguas mieles se pueden citar: el sistema UASB con recirculación de efluentes en un reactor de manto de lodos anaerobio de flujo ascendente (Botello Suárez et al., 2018; Villa-Montoya et al., 2016), la oxidación de compuestos fenólicos mediante la inmovilización de la peroxidasa en la cáscara de soya (Chagas et al., 2015), sistemas de aireación de efluentes (Rossmann et al., 2013), sistema de recirculación (Gardiman Junior et al., 2021), biosistema con Jacinto acuático (Garay Román & Rivero Méndez, 2014), sistemas de sedimentación y remoción (Gutiérrez Guzmán et al., 2014), uso de microrganismos como Pseudomonas sp. (Shanmugam & Gummadi, 2020), membrana vibratoria de nanofiltración y ósmosis inversa (Wisniewski et al., 2018), técnica de intercambio iónico (Ijanu et al., 2019), sistema de digestión anaerobia (Beyene et al., 2014), proceso electroquímico de oxidación (Villanueva-Rodríguez et al., 2014), entre otros.

Estos últimos años, se ha venido trabajando con mucho interés en investigaciones sobre el efecto de polímeros orgánicos (de origen natural) y su actividad floculante que ayuda a efectivizar el tratamiento de aguas residuales contaminadas en la separación sólido-líquido aumentando la velocidad de sedimentación (Dao et al., 2015), dada la potencialidad de floculación de los polímeros estudiada hace décadas atrás (L. K. Wang et al., 1977), entre las materias primas fuente de estos polímeros naturales orgánicos se puede citar el uso del quitosano, quitosano-policramida (Chen et al., 2003; Lichtfouse et al., 2019; Rodriguez Jimenez & Gallego Suárez, 2019; B. Wang et al., 2011; Yang et al., 2008), así como de plantas medicinales como la Moringa oleífera (Bancessi et al., 2020; Gautam et al., 2020; Madrona et al., 2010; Mateus et al., 2017; Sharma, 2008; Zaid et al., 2019), también la Caesalpinia spinosa (Revelo et al., 2015; Valeriano-Mamani & Matos-Chamorro, 2019), entre otras como Prosopis juliflora, la cáscara de maní (Gautam et al., 2020). Sin embargo, aun viene siendo poco estudiado el uso de polímeros y otras técnicas de floculación en el tratamiento de aguas mieles de café, por tanto, merece una especial atención desde el punto de vista académico y tecnológico, principalmente para las organizaciones cafetaleras que vienen teniendo una importante participación en el mercado de exportaciones (JNC, 2022).

El presente estudio buscó desarrollar un protocolo para el tratamiento de aguas mieles del beneficio húmedo del café mediante el uso de polímeros naturales orgánicos. Para ello se trabajó con productores cafetaleros de la Cooperativa Agraria Valles del Café, quienes tienen el desafío de desarrollar mejoras tecnológicas para una producción responsable.

Toma de muestras y muestreo

Como una primera fase del estudio, se realizó un muestreo de las aguas mieles de 3 miniplantas de beneficio húmedo de café de 3 productores cafetaleros de la Cooperativa Agraria Valles del Café, esto durante el periodo de cosechas, estas fueron (1) miniplanta La Laguna, (2) miniplanta La Unión, y (3) miniplanta Shimanilla. En estas muestras se analizó las propiedades fisicoquímicas básicas para determinar si hay homogeneidad de las aguas mieles producidas por los productores.

En una segunda fase se realizó un análisis del agua miel, post tratamiento con polímeros naturales orgánicos, en cuanto a variables fisicoquímicas en variables de comparación utilizados (Torres-Valenzuela et al., 2019; Zambrano-Franco & Izaza-Hinestroza, 1998): pH, temperatura, conductividad eléctrica, demanda bioquímica de oxígeno (DBO), demanda química de oxígeno (DQO), contenido de aceites y grasas, sólidos totales en suspensión TSS, oxígeno disuelto, contenido de nitratos y fósforo total. Asimismo, se realizó un análisis microbiológico relacionado a la determinación de la calidad del agua a nivel microbiológico (Ramírez et al., 2021; Rodríguez et al., 2018): Recuento de aerobios mesófilos, recuento de levaduras, recuento de bacterias ácido lácticas, enumeración de coliformes totales y enumeración de Escherichia coli. Esto a fin de conocer la carga contaminante que tenían las aguas mieles en estudio tanto a nivel físicoquímico como microbiológico.

Las muestras tanto en la primera como en la segunda fase fueron analizadas en dos laboratorios. Los indicadores fisicoquímicos en el Laboratorio Analytical Laboratory E.I.R.L. que es un laboratorio acreditado por el IAS (International, Accreditación Service) y el INACAL (Instituto Nacional de la Calidad). Los indicadores microbiológicos en el Laboratorio de Ecología Microbiana y Microbiología Marino Tabusso de la Universidad Nacional Agraria La Molina, Lima, Perú.

Determinación y preparación de polímeros orgánicos para el tratamiento de las aguas mieles

Se realizó un acondicionamiento de tanques en los tres (3) centros de beneficio húmedo del estudio, para la recepción de aguas mieles y su tratamiento. Estos tanques fueron ubicados como una excavación en suelo y recubiertos con geomembrana.

En las aguas mieles almacenadas en los tanques, se realizó los ensayos de pre-tratamiento con tres (3) tipos de polímeros orgánicos, para de ellos seleccionar los dos (2) más eficientes, para ello se tuvo en cuenta el carácter de carga aniónica o catónica de estos polímeros. Con los dos tipos de polímeros seleccionados, se aplicaron dosis de concentrado al 0.5% de cada polímero, además de un tratamiento físico previo a la aplicación del polímero, consistente en la remoción del agua miel de la fermentación.

Los 3 tipos de polímeros utilizados provinieron de: polímero A de “semilla de Moringa oleífera”, polímero C derivado de la celulosa “carboximetil celulosa” y biopolímero B “Quitosano”.

Se seleccionó un polímero con carga aniónica (polímero C) y otro con carga catiónica (polímero B), cuya preparación del caldo para el tratamiento fue la siguiente:

Para la preparación caldo de polímero aniónico se tuvo como ingredientes 100 gr de polímero y 20 litros de agua, procediendo a diluir 100 de polímero en 8 litros de agua tibia mezclando con batidora, luego adicionar 12 litros de agua fría y mezclar.

Para la preparación caldo de polímero catiónico se tuvo como ingredientes 100 gr de polímero, 12 litros de vinagre al 5% de acidez y 8 litros de agua, procediendo a verter el polímero de forma lenta con los 8 litros de agua y realizando mezcla con movimientos suaves de la batidora, finalmente agregar los 12 litros de vinagre y mezclar hasta homogenizar.

Los caldos de los polímeros seleccionados, se aplicaron dosis de concentrado de polímero al agua miel, además de un tratamiento físico previo a la aplicación del polímero, consistente en la remoción del agua miel.

Para la realización de los ensayos fue necesario el uso de algunos equipos como potenciómetro, balanza de precisión, centrífuga, batidora; y materiales como jarras de plástico graduadas y baldes.

El procedimiento básico para el tratamiento de las aguas mieles con los polímeros orgánicos fue el siguiente: a) medir 10 litros de agua miel en un balde, b) medir la dosis correspondiente del concentrado de polímero orgánico en la jarra medidora, c) mezclar y homogenizar el concentrado de polímero orgánico aplicado al agua miel, por un minuto a 200 revoluciones/minuto, d) filtrar la solución con un filtro de organza, para separar los sólidos del líquido. Este líquido obtenido al final es el que se analiza para comparar con los Límites Máximos Permisibles establecidos por la norma ambiental.

Análisis de las aguas mieles tratadas y análisis de resultados

Posterior a los tratamientos empleados, el líquido saliente a partir de las aguas mieles tratadas, en cada una de las tres miniplantas, fueron enviadas para su análisis respectivo los laboratorios antes indicados.

Los resultados obtenidos de la evaluación fisicoquímica, se compararon con los Límites Máximos Permisibles (Decreto Supremo N° 004-2017-MINAM, 2017) precisados por la legislación ambiental peruana para agua de riego nivel tres a partir de un agua residual tratada.

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Selección de polímeros orgánicos para el tratamiento de las aguas mieles

Producto de la realización de las pruebas en laboratorio se seleccionó dos tipos de polímeros orgánicos. Uno de estos polímeros es el quitosano “polímero orgánico B” que tiene carácter catiónico (+) el cual permite un arrastre por adsorción a los microorganismos y los coloides del agua miel que tienen carga negativa. El otro polímero carmelosa o CMC “polímero orgánico C” que tiene carácter aniónico (-) que por el contrario arrastra a los microorganismos y coloides del agua miel que tienen carga positiva. Ambos polímeros fueron aplicados en secuencia, primero el polímero C realizando una agitación vigorosa por espacio de un minuto y luego el polímero B generando agitación suave por un minuto, inmediatamente se forma un flóculo consistente y fácil de separar, como parte del tratamiento.

Este principio ha sido estudiado décadas atrás, encontrándose que los polímeros aniónicos son los más utilizados, sin embargo, se tienen mejores beneficios si se utilizan ambos polímeros juntos, aniónico y catiónico previos a una operación de filtración (Wang et al., 1977).

Resultados del tratamiento de las aguas mieles con los polímeros orgánicos

Se tuvo como expectativa obtener agua residual tratada, que cumpla con los Límites Máximos Permisibles (LMP) precisados por la normativa ambiental peruana (Decreto Supremo N° 004-2017-MINAM, 2017) en cuanto a agua para riego nivel tres, según los siguientes límites de indicadores fisicoquímicos y microbiológicos: Conductividad 2500 µS/cm, pH de 6.5 a 8.5, Temperatura °C Δ 3, Aceites y grasas 5 mg/l, Oxígeno disuelto ≥ 4, Demanda Bioquímica de Oxígeno-DBO5 de 15 mg/l, Demanda Química de Oxígeno-DQO de 40 mg/l, nitratos 100 mg/l, Escherichia coli 10 NMP/ml.

En la tabla 1, se presenta los resultados de medición de los indicadores a nivel fisicoquímico y microbiológico de las aguas mieles antes y después del tratamiento con polímeros orgánicos (corresponde al mejor tratamiento). Se analizó cumplimiento de indicadores en atención a la norma.

Tabla 1. Resultados de laboratorio a los indicadores fisicoquímicos y microbiológicos de las aguas mieles antes y después del tratamiento con polímeros naturales orgánicos, miniplanta La Laguna.

Indicador	Unidad medida	Resultado agua miel sin tratamiento	Resultado agua miel tratada-laboratorio	Resultado de agua miel tratada-Piloto	% Reducción logrado-laboratorio	% Reducción logrado-piloto
*Conductividad ()**	µS/cm	5980	2160	2580	63,88	56,86
pH ()**	(valor)	3,63	3,32	3,47	8,54	4,41
Temperatura ()**	°C	20,1	21,1	19,9	-	1,00
*Aceites y grasas ()**	mg/l	3954	7	<0,48	99,82	-
*Sólidos suspendidos totales ()**	mg total sólidos suspendidos/l	38833	753	487	98,06	98,75
Oxígeno disuelto ()**	mgDO/l	1,3	0,2	0,3	84,62	76,92
*Demanda bioquímica de oxígeno-DBO₅ ()**	mg/l	83350	21750	24300	73,91	70,85
*Demanda química de oxígeno-DQO ()**	mg O₂/l	174791	68693	45950,8	60,70	73,71
*Fosforo total ()**	mg P/l	178,075	34,228	6,739	80,78	96,22
*Nitrato ()**	mg NO₃-/l	62,111	0,922	6,533	99,99	89,48
Recuento de aerobios mesófilos ()**	UFC/ml	15 x 10⁷	34 x 10⁴	-	99,77	-
Recuento de levaduras ()**	UFC/ml	35 x 10⁵	11 x 10⁴	-	96,86	-
Recuento de bacterias ácido lácticas ()**	UFC/ml	50 x 10⁶	33 x 10⁴	-	99,34	-
Enumeración de coliformes totales ()**	NMP/ml	< 3	< 1.8	-	-	-
*Enumeración de Escherichia coli* ()	NMP/ml	< 3	< 1.8	-	-	-

Tabla 2. Resultados de laboratorio a los indicadores fisicoquímicos y microbiológicos de las aguas mieles antes y después del tratamiento con polímeros naturales orgánicos, miniplanta La Unión.

Indicador	Unidad medida	Resultado agua miel sin tratamiento	Resultado agua miel tratada-laboratorio	Resultado de agua miel tratada-Piloto	% Reducción logrado-laboratorio	% Reducción logrado-piloto
*Conductividad ()**	µS/cm	1678	2230	2840	-	-
pH ()**	(valor)	3,28	3,47	3,70	-	-
Temperatura ()**	°C	19,5	20,9	19,9	-	-
*Aceites y grasas ()**	mg/l	725,60	22,90	20,40	96,84	97,19
*Sólidos suspendidos totales ()**	mg total sólidos suspendidos/l	10067	1285	700	87,24	93,05
Oxígeno disuelto ()**	mgDO/l	2,8	0,4	0,2	85,71	92,86
*Demanda bioquímica de oxígeno-DBO ()**	mg/l	22320	17685	27525	20,77	-
*Demanda química de oxígeno-DQO ()**	mg O₂/l	44657	37691	51970,9	15,60	-
*Fosforo total ()**	mg P/l	121,137	26,300	7,974	78,29	93,42
*Nitrato ()**	mg NO₃-/L	2,125	2,358	9,179	-	-
Recuento de aerobios mesófilos ()**	UFC/ml	18 x 10⁷	16 x 10⁶	-	91,11	-
Recuento de levaduras ()**	UFC/ml	35 x 10⁵	35 x 10⁵	-	-	-
Recuento de bacterias ácido lácticas ()**	UFC/ml	51 x 10⁶	15 x 10⁵	-	97,06	-
Enumeración de coliformes totales ()**	NMP/ml	4	< 1,8	-	-	-
*Enumeración de Escherichia coli* ()	NMP/ml	< 3	< 1,8	-	-	-

Tabla 3. Resultados de laboratorio a los indicadores fisicoquímicos y microbiológicos de las aguas mieles antes y después del tratamiento con polímeros naturales orgánicos, miniplanta Shimanilla

Indicador	Unidad medida	Resultado agua miel sin tratamiento	Resultado agua miel tratada-laboratorio	Resultado de agua miel tratada-Piloto	% Reducción logrado-laboratorio	% Reducción logrado-piloto
*Conductividad ()**	µS/cm	3180	3180	2830	-	11.01
pH ()**	(valor)	3,41	3,49	3,60	-	-
Temperatura ()**	°C	20	21	19,8	-	1,00
*Aceites y grasas ()**	mg/l	1991	11,90	14,30	99,40	99,28
*Sólidos suspendidos totales ()**	mg total sólidos suspendidos/l	11750	862	710	92.66	93.96
Oxígeno disuelto ()**	mgDO/l	2	0.2	0.1	90.00	95.00
*Demanda bioquímica de oxígeno-DBO ()**	mg/l	45166	20610	21330	54,37	52,77
*Demanda química de oxígeno-DQO ()**	mg O₂/l	90334	43878	40265,2	51,43	55,43
*Fosforo total ()**	mg P/l	189,898	14.636	6.617	92,29	96,52
*Nitrato ()**	mg NO₃-/L	4,648	0,603	1,014	99,99	78,18
Recuento de aerobios mesófilos ()**	UFC/ml	16 x 10⁷	16 x 10⁶	-	90,00	-
Recuento de levaduras ()**	UFC/ml	77 x 10⁴	77 x 10⁴	-	-	-
Recuento de bacterias ácido lácticas ()**	UFC/ml	43 x 10⁶	15 x 10⁵	-	96,51	-
Enumeración de coliformes totales ()**	NMP/ml	< 3	< 1,8	-	-	-
*Enumeración de Escherichia coli* ()	NMP/ml	< 3	< 1,8	-	-	-

CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

Los polímeros naturales orgánicos de carácter catiónico y aniónico son potencialmente ventajosos para ser usados como tratamiento en la limpieza de aguas mieles del café, los cuales producto de la floculación favorecen la reducción sustancial en los indicadores fisicoquímicos y microbiológicos. Convirtiéndose así, en una tecnología potencial a ser mejorada para su utilización en un procesamiento ecológico y sostenible del café, para los mercados de especialidad a los cuales apuntan las organizaciones cafetaleras.

En el presente estudio se ha encontrado que la aplicación de los polímeros orgánicos, un aniónico y un catiónico, para la limpieza de las aguas mieles del café, muestran una adaptabilidad para investigaciones complementarias, que permitan optimizar la reducción de los indicadores de la Demanda Bioquímica de Oxígeno, la Demanda Química de Oxígeno y el pH en el agua miel de café.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen el financiamiento del Programa PROINNOVATE (antes Innóvate Perú) del Ministerio de la Producción del Perú por el financiamiento al proyecto “Diseño y validación de un sistema de tratamiento de las aguas mieles del beneficio del Café mediante polímeros orgánicos, en el distrito de Chirinos – Cajamarca” con Convenio N° 153-INNOVATE PERU-PIEC1-2020. Se agradece también a la Cooperativa Agraria Valles del Café y a la Universidad Nacional Agraria La Molina por su aporte en el financiamiento del proyecto y su colaboración en el desarrollo de la investigación.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

[1] Alemayehu, Y. A., Asfaw, S. L., & Terfie, T. A. (2021). Reusing Coffee Processing Wastewater and Human Urine as a Nutrient Source: Effect on Cabbage Cultivation. Waste and Biomass Valorization, 12(11), 6165–6175. https://doi.org/10.1007/s12649-021-01451-9

[2] Álvarez, J., Smeltekop, H., & Loza-murguia, M. (2011). Evaluation of a treatment system wastewater prebeneficiado of coffee (Coffea arabica) implemented in the community Carmen Pampa province of Nor Yungas of La Paz Department. Journal of the Selva Andina Research Society, 2(1), 34–42.

[3] Arteaga-Cuba, M. N., Dilas-Jiménez, J. O., Díaz, N., Miranda, O. C., García, J. E., & Vassallo, C. (2021). Isolation and identification of a native microbial consortium for the coffee pulp degradation above 2000 masl. Coffee Science, 16, e161810. https://doi.org/10.25186/.v16i.1810

[4] Bancessi, A., Pinto, M. M. F., Duarte, E., Catarino, L., & Nazareth, T. (2020). The antimicrobial properties of Moringa oleifera Lam. for water treatment: a systematic review. SN Applied Sciences, 2(3). https://doi.org/10.1007/s42452-020-2142-4

[5] Beyene, A., Yemane, D., Addis, T., Assayie, A. A., & Triest, L. (2014). Experimental evaluation of anaerobic digestion for coffee wastewater treatment and its biomethane recovery potential. International Journal of Environmental Science and Technology, 11(7), 1881–1886. https://doi.org/10.1007/s13762-013-0339-4

[6] Botello Suárez, W. A., da Silva Vantini, J., Duda, R. M., Giachetto, P. F., Cintra, L. C., Tiraboschi Ferro, M. I., & de Oliveira, R. A. (2018). Predominance of syntrophic bacteria, Methanosaeta and Methanoculleus in a two-stage up-flow anaerobic sludge blanket reactor treating coffee processing wastewater at high organic loading rate. Bioresource Technology, 268, 158–168. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.06.091

[7] Chagas, P. M. B., Torres, J. A., Silva, M. C., & Corrêa, A. D. (2015). Immobilized soybean hull peroxidase for the oxidation of phenolic compounds in coffee processing wastewater. International Journal of Biological Macromolecules, 81, 568–575. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2015.08.061

[8] Chen, L., Chen, D., & Wu, C. (2003). A New Approach for the Flocculation Mechanism of Chitosan. Journal of Polymers and the Environment, 11(3), 87–92. https://doi.org/10.1023/A:1024656813244

[9] Dao, V. H., Cameron, N. R., & Saito, K. (2015). Synthesis, properties and performance of organic polymers employed in flocculation applications. Polymer Chemistry, 7(1), 11–25. https://doi.org/10.1039/c5py01572c

[10] Devi, R. (2010). Innovative technology of COD and BOD reduction from coffee processing wastewater using Avocado Seed Carbon (ASC). Water, Air, and Soil Pollution, 207(1–4), 299–306. https://doi.org/10.1007/s11270-009-0137-2

[11] Diaz, C., & Carmen, M. (2017). Linea de base del café en el Perú. file:///C:/Users/Usuario/Downloads/Libro cafe_PNUD_PE.pdf

[12] Gallego Ocampo, H. L., & Mejía Francia, M. (2016). La electrocoagulación como alternativa de tratramiento de aguas mieles provenientes del proceso de beneficio húmedo del café. Vitae, 23, S684–S688. https://www.proquest.com/docview/1783661288?pq-origsite=gscholar&fromopenview=true

[13] Garay Román, J., & Rivero Méndez, J. (2014). Biosistema para purificar aguas residuales del beneficio húmedo de café, distrito La Coipa, departamento de Cajamarca, 2014. Manglar, 11(1), 43–50.

[14] Gardiman Junior, B. S., Guimarães, D., Freitas, W. S., Reis, E. F., & O. Garcia, G. (2021). Treatment of Coffee Wastewater with recirculation: optimization and validation. International Journal of Environmental Science and Technology, 19(5), 3963–3974. https://doi.org/10.1007/s13762-021-03340-z

[15] Gautam, A. K., Markandeya, Singh, N. B., Shukla, S. P., & Mohan, D. (2020). Lead removal efficiency of various natural adsorbents (Moringa oleifera, Prosopis juliflora, peanut shell) from textile wastewater. SN Applied Sciences, 2(2). https://doi.org/10.1007/s42452-020-2065-0

[16] Gutiérrez Guzmán, N., Valencia Granada, E., & Aragon Calderon, R. A. (2014). EFICIENCIA DE REMOCIÓN EN SISTEMAS DE TRATAMIENTO DE AGUAS RESIDUALES DEL BENEFICIO DE CAFÉ (Coffea arabica). Colombia Forestal, 17(2), 151. https://doi.org/10.14483/udistrital.jour.colomb.for.2014.2.a02

[17] Ijanu, E. M., Kamaruddin, M. A., & Norashiddin, F. A. (2019). Coffee processing wastewater treatment: a critical review on current treatment technologies with a proposed alternative. Applied Water Science, 10(1). https://doi.org/10.1007/s13201-019-1091-9

[18] JNC. (2022). Café: Exportaciones por empresa-Enero a diciembre 2021. https://juntadelcafe.org.pe/wp-content/uploads/2022/03/Exportación-de-Café-Enero-Diciembre-Por-Empresa2021.pdf

[19] Lichtfouse, E., Morin-Crini, N., Fourmentin, M., Zemmouri, H., do Carmo Nascimento, I. O., Queiroz, L. M., Tadza, M. Y. M., Picos-Corrales, L. A., Pei, H., Wilson, L. D., & Crini, G. (2019). Chitosan for direct bioflocculation of wastewater. Environmental Chemistry Letters, 17(4), 1603–1621. https://doi.org/10.1007/s10311-019-00900-1

[20] Madrona, G. S., Serpelloni, G. B., Salcedo Vieira, A. M., Nishi, L., Cardoso, K. C., & Bergamasco, R. (2010). Study of the effect of Saline solution on the extraction of the Moringa oleifera seed’s active component for water treatment. Water, Air, and Soil Pollution, 211(1–4), 409–415. https://doi.org/10.1007/s11270-009-0309-0

[21] Mateus, G. A. P., Formentini-Schmitt, D. M., Nishi, L., Fagundes-Klen, M. R., Gomes, R. G., & Bergamasco, R. (2017). Coagulation/Flocculation with Moringa oleifera and Membrane Filtration for Dairy Wastewater Treatment. Water, Air, and Soil Pollution, 228, 342(9). https://doi.org/10.1007/s11270-017-3509-z

[22] Decreto Supremo N° 004-2017-MINAM, (2017). https://www.minam.gob.pe/wp-content/uploads/2017/06/DS-004-2017-MINAM.pdf

[23] Pires, J. F., Cardoso, L. de S., Schwan, R. F., & Silva, C. F. (2017). Diversity of microbiota found in coffee processing wastewater treatment plant. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 33(12), 0. https://doi.org/10.1007/s11274-017-2372-9

[24] Ramírez, L. E. C., Rubiano, C. C. P., Arias, H. P., & Galindo, D. H. (2021). Determination of the microbiological quality of the Toca-Boyacá River, downstream Tuaneca and the center sectors. Revista Lasallista de Investigacion, 18(1), 192–202. https://doi.org/10.22507/rli.v18n1a12

[25] Revelo, A., Proaño, D., & Banchón, C. (2015). Textile wastewater biocoagulation by Caesalpinia spinosa extracts. Enfoque UTE, 6(1), 1–12. http://ingenieria.ute.edu.ec/enfoqueute/index.php/revista/article/view/50%0Ahttp://ingenieria.ute.edu.ec/enfoqueute/index.php/revista/article/download/50/54

[26] Reyes-Prado, M. A., Ramírez-Pereda, B., Ramírez, K., Gonzáles Huitrón, V., Rodríguez-Mata, A. E., Uriarte Aceves, P. M., & Amabilis-Sosa, L. (2022). Recuperación de nutrientes y degradación de materia orgánica de agua residual agrícola por medio de un sistema uv/h2O2 optimizado. Revista Internacional de Contaminación Ambiental, 38, 235–248. https://doi.org/https://doi.org/10.20937/RICA.54236

[27] Rodriguez Jimenez, D. M., & Gallego Suárez, D. D. J. (2019). Evaluación del quitosano como coagulante para el tratamiento de efluentes piscícolas. Revista Colombiana de Biotecnología, 21(1), 6–17. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v21n1.73340

[28] Rodríguez, S. C., Asmundis, C. L., Ayala, M. T., & Arzú, O. R. (2018). Presencia de indicadores microbiológicos en agua para consumo humano en San Cosme (Corrientes, Argentina). Revista Veterinaria, 29(1), 9. https://doi.org/10.30972/vet.2912779

[29] Rossmann, M., Matos, A. T., Abreu, E. C., Silva, F. F., & Borges, A. C. (2013). Effect of influent aeration on removal of organic matter from coffee processing wastewater in constructed wetlands. Journal of Environmental Management, 128, 912–919. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2013.06.045

[30] Sengupta, B., Priyadarshinee, R., Roy, A., Banerjee, A., Malaviya, A., Singha, S., Mandal, T., & Kumar, A. (2020). Toward sustainable and eco-friendly production of coffee: abatement of wastewater and evaluation of its potential valorization. Clean Technologies and Environmental Policy, 22(5), 995–1014. https://doi.org/10.1007/s10098-020-01841-y

[31] Shanmugam, M. K., & Gummadi, S. N. (2020). Degradation of synthetic coffee wastewater using induced cells of Pseudomonas sp. NCIM 5235. International Journal of Environmental Science and Technology, 18(10), 3013–3022. https://doi.org/10.1007/s13762-020-03019-x

[32] Sharma, P. (2008). Removal of Cd (II) and Pb (II) from aqueous environment using Moringa oleifera seeds as biosorbent: A low cost and ecofriendly technique for water purification. Transactions of the Indian Institute of Metals, 61(2–3), 107–110. https://doi.org/10.1007/s12666-008-0027-0

[33] Suhartini, S., Hidayat, N., & Rosaliana, E. (2013). Influence of powdered Moringa oleifera seeds and natural filter media on the characteristics of tapioca starch wastewater. International Journal of Recycling of Organic Waste in Agriculture, 2(1), 1–11. https://doi.org/10.1186/2251-7715-2-12

[34] Torres-Valenzuela, L. S., Sanín-Villarrea, A., Arango-Ramírez, A., & Serna-Jiménez, J. A. (2019). Caracterización fisicoquímica y microbiológica de aguas mieles del beneficio del café. Revista ION, 32(2), 59–66. https://doi.org/10.18273/revion.v32n2-2019006

[35] Valeriano-Mamani, J. J., & Matos-Chamorro, R. A. (2019). Influence of Tara (Caesalpinia spinosa) Gum as an Aid in the Coagulation-Flocculation Process to Remove the Turbidity of an Artificial Suspension of Bentonite. Informacion Tecnologica, 30(5), 299–308. https://doi.org/10.4067/S0718-07642019000500299

[36] Villa-Montoya, A. C., Ferro, M. I. T., & de Oliveira, R. A. (2016). Removal of phenols and methane production with coffee processing wastewater supplemented with phosphorous. International Journal of Environmental Science and Technology, 14(1), 61–74. https://doi.org/10.1007/s13762-016-1124-y

[37] Villanueva-Rodríguez, M., Bello-Mendoza, R., Wareham, D. G., Ruiz-Ruiz, E. J., & Maya-Treviño, M. L. (2014). Discoloration and organic matter removal from coffee wastewater by electrochemical advanced oxidation processes. Water, Air, and Soil Pollution, 225(12). https://doi.org/10.1007/s11270-014-2204-6

[38] Wang, B., Zhang, Y., & Miao, C. (2011). Preparation of cationic chitosan-polyacrylamide flocculant and its properties in wastewater treatment. Journal of Ocean University of China, 10(1), 42–46. https://doi.org/10.1007/s11802-011-1741-5

[39] Wang, L. K., Wang, M. H., & Kao, J. F. (1977). Application and determination of organic polymers. Water, Air, and Soil Pollution, 9(3), 337–348. https://doi.org/10.1007/BF00280682

[40] Wisniewski, C. M., Slater, C. S., & Savelski, M. J. (2018). Dynamic vibratory membrane processing for use in water recovery from soluble coffee product manufacturing wastewater. Clean Technologies and Environmental Policy, 20(8), 1791–1803. https://doi.org/10.1007/s10098-018-1569-4

[41] Yang, H., Yuan, B., Lu, Y., & Cheng, R. (2008). Preparation of magnetic chitosan microspheres and its applications in wastewater treatment. Science in China, Series B: Chemistry, 52(3), 249–256. https://doi.org/10.1007/s11426-008-0109-1

[42] Zaid, A. Q., Ghazali, S. B., Mutamim, N. S. A., & Olalere, O. A. (2019). Experimental optimization of Moringa oleifera seed powder as bio-coagulants in water treatment process. SN Applied Sciences, 1(5). https://doi.org/10.1007/s42452-019-0518-0

[43] Zambrano-Franco, D. A., & Izaza-Hinestroza, J. D. (1998). Demanda química de oxígeno y nitrógeno total, de los subproductos del proceso tradicional de beneficio húmedo del café. Cenicafé, 49(4), 279–289. https://doi.org/10.15332/dt.inv.2020.01508

Tratamiento aplicado	DBO (mg/l) / % Reducción	DQO (mg O₂/l) / % Reducción	pH logrado	Referencia
Polímeros orgánicos en aguas mieles de café	17685 (21%)	37691 (16%)	3,70	(este estudio-valor más óptimo obtenido)
Semillas de moringa y filtración natural en aguas residuales	6,5 (99,6%)	21,47 (99,7%)	7,8	(Suhartini et al., 2013)
Sistema de oxigenación en aguas mieles de café	1245 (80%)	658 (83%)	6,0	(Álvarez et al., 2011)
Carbón de semilla de aguacate en aguas residuales	96 (99,2%)	154 (98,3%)	7,0	(Devi, 2010)
Depuración asistida a partir de inóculo de microbios en aguas residuales	2145 (33%)	3308 (25%)	-	(Pires et al., 2017)